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FluorPen手持式葉綠素熒光儀(分離葉夾)
產品時間:2018-02-22
FluorPen手持式葉綠素熒光儀(分離葉夾)采用調試式熒光測量技術,可設置多種參數,方便測量多種植物葉綠素熒光。外觀小巧,方便攜帶,設計新穎,操作簡單,經濟耐用,精度高穩定性好。自帶暗適應葉夾,容易操作。

FluorPen手持式葉綠素熒光儀(分離葉夾)

FluorPen手持式葉綠素熒光儀(分離葉夾)采用調試式熒光測量技術,可設置多種參數,方便測量多種植物葉綠素熒光。外觀小巧,方便攜帶,設計新穎,操作簡單,經濟耐用,精度高穩定性好。自帶暗適應葉夾,容易操作。

應用領域

 適用于光合作用研究和教學,植物及分子生物學研究,農業、林業,生物技術領域等。研究內容涉及光合活性、脅迫響應、農藥藥效測試、突變等。

  • 植物光合特性和代謝紊亂篩選
  • 生物和非生物脅迫的檢測
  • 植物抗脅迫能力或者易感性研究
  • 代謝混亂研究
  • 長勢與產量評估
  • 植物——微生物交互作用研究
  • 植物——原生動物交互作用研究

典型樣品

  • 植物葉片
  • 其它

工作原理

利用調制式熒光測量技術,采用LED光源,選擇儀器內置的給光方案測量并計算葉綠素熒光的各種參數。

功能特點:實驗過程和測量參數

  • Ft:瞬時葉綠素熒光、暗適應完成后Ft=Fo
  • QY:光量子效率,表示光系統II 的效率,等于Fv/Fm(暗適應完成的樣品)或Fv’/Fm’ (光適應完成的樣品)
  • OJIP:葉綠素熒光瞬時OJIP曲線是反應光合作用過程中植物生理時間過程的重要信號。
  • NPQ:非光化學淬滅,表示光合作用中葉綠素吸收光能后以熱形式散失掉的部分。
  • 光曲線:Qy對不同光強的適應曲線。
  • PAR測量:可在熒光儀上顯示PAR值,可計算20次檢測值的平均。
  • 另外還具有GPS定位功能

技術參數

  • 測量參數:Fo, Ft, Fm, Fm´,QY, OJIP, NPQ 1,2 和光曲線1,2,3。
  • 測量光:藍光(可選紅光或白光)
  • 光化學光和飽和光:0–3000µmol (photons).m-2.s-1可調
  • 波長檢測范圍:697nm-750nm
  • BOIS:可升級

光曲線測量方案

通訊:USB接口

 

  • 存儲:4M
  • 數據存儲:100,000個
  • 顯示:2 x 8字符黑白液晶屏
  • 鍵盤:密封防水設計2鍵
  • 自動關機:5分鐘無操作
  • 電源:4 AAA堿性電池或充電電池
  • 電池壽命:持續測量70 h
  • 低電報警
  • 尺寸:120 x 57 x 30 mm; 4.7" x 2.2" x 1.2"
  • 重量:180 g, 6.5 oz
  • 操作條件:溫度:0 ~ 55 ºC;相對濕度:0 ~ 95 %非冷凝
  • 存儲條件:溫度:-10 to +60 ºC;相對濕度:0 ~ 95 %非冷凝
  • 軟件:FluorPen2.0, Windows 2000,XP或更高*,實時顯示和遙控,植入GPS繪圖,EXCEL輸出
  • PAR傳感器:讀數單位µmol(photons)/m².s,可顯示讀數,檢測范圍400-700 nm

操作軟件與實驗結果

配置型號指南:

標準配置——FP100max-D + GPS模塊 + PAR傳感器:功能完備

簡化配置——FP100max-D:無PAR數據+ 無GPS數據

 

產地: 歐洲

參考文獻

Harding S.A., Jarvie M.M., Lindroth R.L. and Tsai Ch-J. (2009): A comparative analysis of phenylpropanoid metabolism, N utilization, and carbon partitioning in fast- and slow-growing Populus hybrid clones. J. Exp. Botany, Vol. 60 (12), pp. 3443-3452.

Klem K. and Bajerova E. (2008): Adjustment of herbicide dose in sugar beet based on non-invasive chlorophyll fluorescence measurements. AgEng 2008 Conference, Hersonissos, Crete.

附:參數列表

Bckg = background

Fo: = F50µs; fluorescence intensity at 50 µs

Fj: = fluorescence intensity at j-step (at 2 ms)

Fi: = fluorescence intensity at i-step (at 60 ms)

Fm: = maximal fluorescence intensity

Fv: = Fm - Fo (maximal variable fluorescence)

Vj = (Fj - Fo) / (Fm - Fo)

Fm / Fo = Fm / Fo

Fv / Fo = Fv / Fo

Fv / Fm = Fv / Fm

Mo = TRo / RC - ETo / RC

Area = area between fluorescence curve and Fm

Sm = area / Fm - Fo (multiple turn-over)

Ss = the smallest Sm turn-over (single turn-over)

N = Sm . Mo . (I / Vj) turn-over number QA

Phi_Po = (I - Fo) / Fm (or Fv / Fm)

Phi_o = I - Vj

Phi_Eo = (I - Fo / Fm) . Phi_o

Phi_Do = 1 - Phi_Po - (Fo / Fm)

Phi_Pav = Phi_Po - (Sm / tFM); tFM = time to reach Fm (in ms)

ABS / RC = Mo . (I / Vj) . (I / Phi_Po)

TRo / RC = Mo . (I / Vj)

ETo / RC = Mo . (I / Vj) . Phi_o)

DIo / RC = (ABS / RC) - (TRo / RC)

 

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